1、PCR?實驗室的潛在污染來源
①臨床標本中存在的大量待測微生物或待測靶核酸
②科研中得到的質?？寺?
③以前分析研究的特定微生物或靶核酸
④大量存在于實驗環(huán)境中的特定微生物或靶核酸
⑤以前擴增產物的殘留污染,這也是?PCR?實驗室最容易產生的將造成假陽性的“污染”。?
PCR擴增可以引起實驗室中擴增產物的累積,通常一次典型的PCR?擴增可以產生109拷貝的靶序列,如果氣溶膠化,甚至最小的氣溶膠都會含有106拷貝的擴增產物。如果不加以控制,在短期內累積的氣溶膠化的擴增產物即會污染實驗室中的試劑、儀器設備和通風系統(tǒng),從而造成嚴重的實驗室“污染”,出現大量的假陽性結果。
2、PCR?實驗室的防污染措施
進行PCR操作時，操作人員應該嚴格遵守一些操作規(guī)程，最大程度地降低可能出現的PCR污染或杜絕污染的出現。
(一)?劃分操作區(qū)
目前，普通PCR尚不能做到單人單管，實現完全閉管操作，但無論是否能夠達到單人單管，均要求實驗操作在三個不同的區(qū)域內進行，PCR的前處理和后處理要在不同的隔離區(qū)內進行：
1.??試劑準備區(qū)。
2．標本制備區(qū)。
3.??PCR擴增區(qū)及分析區(qū)。
各工作區(qū)要有一定的隔離，操作器材專用，要有一定的方向性。如：試劑準備→標準制備→PCR擴增區(qū)及分析區(qū)。
切記：任何一間的產物及器材不要拿到其他兩個工作區(qū)。
(二)?分裝試劑
PCR擴增所需要的試劑均應在生物安全柜、裝有紫外燈的超凈工作臺或負壓工作臺配制和分裝。所有的加樣器和吸頭需固定放于其中，不能用來吸取擴增后的DNA和其他來源的DNA：
1．PCR用水應為高壓的雙蒸水；
2．引物和dNTP用高壓的雙蒸水在無PCR擴增產物區(qū)配制；
3．引物和dNTP應分裝儲存，分裝時應標明時間，以備發(fā)生污染時查找原因。
(三)?實驗室的嚴格分區(qū)及工作程序的嚴格遵守
試劑準備區(qū)、樣本準備區(qū)、擴增區(qū)、檢測區(qū)等必須備有其各自必需的儀器設備、工作服、手套、加樣器和通風系統(tǒng)。在每個區(qū)使用的試劑和廢物,必須直接在其各自的區(qū)域內分裝或包裝。操作人員必須注意防止通過他們的頭發(fā)、眼鏡、首飾和衣服將擴增產物從污染區(qū)攜帶至清潔區(qū)的可能性。
(四)化學方法
實驗臺面可使用10%的次氯酸鈉(漂白劑)清洗,然后再用70%乙醇或清水洗去次氯酸鈉。次氯酸鈉具有氧化損傷核酸的作用,從而使可能的留在實驗臺面的擴增產物被破壞掉。要注意的是,次氯酸鈉不能區(qū)分提取的目的?DNA?和?PCR?擴增產物,用次氯酸鈉處理的樣本不能用于核酸擴增檢測。在實際工作中,有些物品比如放置擴增反應管的盤必須從污染區(qū)轉回到清潔區(qū)時,在轉回之前,應將其置于2%~10%的次氯酸鈉溶液中過夜,并充分沖洗。
(五)擴增產物的修飾
如對以前擴增產物進行適當修飾,應可以消除其污染后面新的擴增檢測,但為保證不影響靶核酸的擴增檢測,擴增產物修飾方法必須遵循兩個基本原則:
一是擴增產物被修飾后,應可以與隨后打增的靶序列區(qū)分。
二是修飾不能干擾正常的擴增檢測。
不同消除擴增產物污染的方法優(yōu)缺點比較
圖片來自《實時熒光PCR技術》
(六)?實驗操作注意事項
盡管擴增序列的殘留污染大部分是假陽性反應的原因，樣品間的交叉污染也是原因之一。因此，不僅要在進行擴增反應是謹慎認真，在樣品的收集、抽提和擴增的所有環(huán)節(jié)都應該注意：
1.??戴一次性手套，若不小心濺上反應液，立即更換手套；
2.??使用一次性吸頭，嚴禁與PCR產物分析室的吸頭混用，吸頭不要長時間暴露于空氣中，避免氣溶膠的污染；
3.??避免反應液飛濺，打開反應管時為避免此種情況，開蓋前稍離心收集液體于管底。若不小心濺到手套或桌面上，應立刻更換手套并用稀酸擦拭桌面；
4.??操作多份樣品時，制備反應混合液，先將dNTP、緩沖液、引物和酶混合好，然后分裝，這樣即可以減少操作，避免污染，又可以增加反應的精確度；
5.??最后加入反應模板，加入后蓋緊反應管；
6.??操作時設立陰陽性對照和空白對照，即可驗證PCR反應的可靠性，又可以協(xié)助判斷擴增系統(tǒng)的可信性；
7.??盡可能用可替換或可高壓處理的加樣器，由于加樣器最容易受產物氣溶膠或標本DNA的污染，最好使用可替換或高壓處理的加樣器。如沒有這種特殊的加樣器，至少PCR操作過程中加樣器應該專用，不能交叉使用，尤其是PCR產物分析所用加樣器不能拿到其它兩個區(qū)；
8.??重復實驗，驗證結果，慎下結論。
3、實驗室污染的監(jiān)測
一個好的實驗室，要時刻注意污染的監(jiān)測，考慮有無污染是什么原因造成的污染，以便采取措施，防止和消除污染。
對照試驗
（1）陽性對照：在建立PCR反應實驗室及一般的檢驗單位都應設有PCR陽性對照，它是PCR?反應是否成功、產物條帶位置及大小是否合乎理論要求的一個重要的參考標志。陽性??對照要選擇擴增度中等、重復性好，經各種鑒定是該產物的標本，如以重組質粒為陽性對照，其含量宜低不宜高(100個拷貝以下)。但陽性對照尤其是重組質粒及高濃度陽性標本，其對檢測或擴增樣品污染的可能性很大.因而當某一PCR試劑經自己使用穩(wěn)??定，檢驗人員心中有數時，在以后的實驗中可免設陽性對照。
（2）陰性對照：每次PCR實驗務必做陰性對照。它包括①標本對照：被檢的標本是血清就用鑒定后的正常血清作對照；被檢的標本是組織細胞就用相應的組織細胞作對照。②試劑對照：在PCR試劑中不加模板DNA或RNA，進行PCR擴增，以監(jiān)測試劑是否污染。
（3）重復性試驗
（4）選擇不同區(qū)域的引物進行PCR擴增
4、實驗室污染的消除
實驗室一旦發(fā)生污染，檢測工作應立即停止，直到確認消除污染后才能重新開始檢測。首先，要查找污染源和明確污染范圍。然后，根據污染源和污染范圍采取有效的去污染措施，結合各種不同方法以達到最佳效果。
（1）標本污染生物安全柜的操作臺造成局限污染時：
立即用吸水紙覆蓋，并使用0.55%含氯消毒劑進行噴灑消毒。消毒液需要現用現配，24小時內使用。
（2）標本傾覆造成實驗室污染時：
保持實驗室空間密閉，避免污染物擴散。立即使用潤濕有0.55%含氯消毒劑的毛巾覆蓋污染區(qū)。必要時（如大量溢撒時）可用過氧乙酸加熱熏蒸實驗室，劑量為2g/m3，熏蒸過夜；或20g/L過氧乙酸消毒液用氣溶膠噴霧器噴霧，用量8ml/m3，作用1-2小時；必要時或用高錳酸鉀-甲醛熏蒸：高錳酸鉀8g/m3，放入耐熱耐腐蝕容器（陶罐或玻璃容器），后加入甲醛（40%）10ml/m3，熏蒸4小時以上。熏蒸時室內濕度60%-80%。
（3）清理污染物時：
嚴格遵循活病毒生物安全操作要求，采用壓力蒸汽滅菌處理，并進行實驗室換氣等，防止次生危害。
5、新冠病毒核酸檢測常見問題
（1）新冠試劑出現翹尾，怎么處理？
答：如果是個別單一通道翹尾，不管是FAM還是VIC通道，首先按照要求復查，復查建議重新采樣，如果不方便重新采樣建議對原有樣本進行重新提取核酸驗證，如果復查陰性判讀陰性，如果復查還是同一通道翹尾，就要對結果仔細審核，一是要排除實驗室污染，二是要對病人信息了解清楚，從臨床癥狀及接觸史排查，如果沒法確認，建議必須重新采樣復查，如有必要可以采用另一家試劑來驗證。如果出現大量的弱陽性擴增翹尾，首要原因是考慮實驗室污染，可以通過做環(huán)境樣本和陰性對照做驗證排除。
（2）N基因和1ab基因是新冠病毒的特有基因嗎，靈敏度哪個更高？是否會和其他冠狀病毒片段重疊？
答：N基因跟1ab都是特異的，不會跟其他呼吸道病原體交叉反應。設計時候，兩個基因的序列不一樣，導致靈敏度不一樣，N基因的靈敏度比1ab靈敏度高。
（3）新冠檢測結果和臨床診斷不符合，怎么解讀？
答：新冠病毒由于是RNA病毒，容易降解，另外檢測結果也和取樣，核酸提取以及樣本本身的核酸濃度有關，需要逐一分析，同時可以結合臨床癥狀判讀。
（4）采用生理鹽水做陰性對照，內標也會增長，怎么解釋？
答：因為試劑采用的是內源性內標，內源性內標是用人源基因標記，此基因存在于人的表皮細胞內，操作過程中就可能會出現人源性的污染，另外環(huán)境污染也有可能導致內標增長，這也是前面提到的建議做環(huán)境樣本質控。
（5）新冠樣本內標不出如何處理？
答：如果新冠樣本內標不出，該樣本必須復查，可重新混勻該樣本提取核酸，如果重新提取該樣本內標還是不出，在排除提取問題的情況下，說明采樣不合格，要通知臨床重新采樣復查。
（6）采集環(huán)境樣本檢測新冠狀病毒，為啥大部分樣本內標不出，偶爾個別樣本檢測出內標？
答：因為新冠試劑檢測的是人內源性內標，環(huán)境樣本一般不含有人源細胞，所以檢測不出內標；偶爾檢出內標，可能該環(huán)境樣本上有人源性細胞粘附，故而檢出內標。
最后是兩條有用的小訣竅：
●?面對多份樣品，制備反應混合液時，先將?dNTP、緩沖液、引物和酶混合好，然后用分液功能進行分裝。
●?在加入模板時，按照“陰性對照-待測樣品-陽性對照”的加樣順序，操作上應遵循“開管蓋-加模板-蓋管蓋”的原則。
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來源：我是質控人